技術(shù)文章
人腸道類器官作為一種在體外高度模擬人體腸道結(jié)構(gòu)和功能的三維模型,在疾病建模、藥物篩選、宿主-微生物互作及再生醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域展現(xiàn)出巨大潛力。其成功構(gòu)建的基石在于能否高效、穩(wěn)定地從腸道組織中分離出具有干性的隱窩基干細(xì)胞。本文系統(tǒng)性地總結(jié)人腸道類器官構(gòu)建過程中,從組織獲取到干細(xì)胞分離、最終形成類器官的關(guān)鍵技術(shù)要點(diǎn)、常見問題及解決方案,為相關(guān)研究提供實(shí)踐參考。
腸道上皮是一個持續(xù)更新的動態(tài)系統(tǒng),其再生能力源于位于腸隱窩基底部的Lgr5+腸道干細(xì)胞。2009年,Clevers團(tuán)隊(duì)開創(chuàng)性地在體外利用單個Lgr5+干細(xì)胞成功培育出具有隱窩-絨毛結(jié)構(gòu)的腸道類器官,標(biāo)志著該領(lǐng)域的重大突破。這一技術(shù)的核心在于:從人腸道組織中分離出完整的隱窩單元或活性干細(xì)胞,并將其置于能模擬體內(nèi)干細(xì)胞巢(Niche)的基質(zhì)膠中,提供必需的生長因子信號。
整個流程可大致分為:組織前處理、隱窩/干細(xì)胞分離、類器官培養(yǎng)與傳代。每一步的精細(xì)操作都直接影響最終的成敗。
技術(shù)要點(diǎn):
樣本來源與運(yùn)輸: 樣本可來源于手術(shù)切除的健康或病變腸段、內(nèi)鏡活檢組織。關(guān)鍵在于保持組織活性。離體后應(yīng)立即置于預(yù)冷的(4°C)組織保存液(如含有高濃度抗生素的Advanced DMEM/F12)中,并在最短時間內(nèi)(建議<24小時)進(jìn)行處理。冰上操作以降低代謝。
組織清洗與修剪: 用含有多重抗生素(如青霉素/鏈霉素、慶大霉素、兩性霉素B等)的PBS或Advanced DMEM/F12充分沖洗,直至清洗液清澈,以去除黏液和內(nèi)容物。隨后,使用精細(xì)解剖工具小心去除腸壁的肌肉層和脂肪組織,僅保留黏膜層。這一步能極大減少后續(xù)的微生物污染和成纖維細(xì)胞過度生長。
黏膜剝離: 將修剪后的黏膜組織剪成約0.5 cm2的小塊,便于后續(xù)消化。
這是整個流程中最關(guān)鍵、技術(shù)性的環(huán)節(jié),主要方法有化學(xué)消化法和物理分離法。
A. 化學(xué)消化法(常用)
原理: 利用螯合劑和酶選擇性解離細(xì)胞間連接,釋放隱窩結(jié)構(gòu)。
關(guān)鍵試劑: EDTA (乙二胺四乙酸) 是核心。它通過螯合Ca2?和Mg2?,破壞依賴于二價陽離子的細(xì)胞黏附分子(如E-cadherin),從而松解隱窩單元。
標(biāo)準(zhǔn)流程與要點(diǎn):
EDTA孵育: 將組織碎片置于含2-30 mM EDTA的PBS溶液中(常用濃度為5-10 mM),在4°C下緩慢搖動孵育30分鐘至2小時。低溫孵育有助于溫和解離,減少對干細(xì)胞的損傷。
機(jī)械震蕩: 孵育后,用力搖晃試管或使用大口徑吸管反復(fù)吹打。此時,隱窩應(yīng)從黏膜上脫落,懸液變得渾濁。
洗滌與收集: 使用預(yù)冷的PBS或基礎(chǔ)培養(yǎng)基洗滌細(xì)胞懸液,通過100 μm細(xì)胞篩過濾以去除大塊組織。濾液需再次通過40 μm細(xì)胞篩,此時完整的隱窩(通常>40 μm)會被截留在篩網(wǎng)上,而單個細(xì)胞和碎片則被濾除。
顯微鏡下確認(rèn): 收集40 μm篩網(wǎng)上的物質(zhì),重懸后于倒置顯微鏡下觀察。成功的分離應(yīng)看到大量形態(tài)完整、呈“花瓶狀"或“戒指狀"的隱窩結(jié)構(gòu),輪廓清晰,內(nèi)部細(xì)胞緊密。碎片和單個細(xì)胞應(yīng)盡可能少。
B. 隱窩富集與純化
目的: 進(jìn)一步提高隱窩的純度,去除殘留的單個細(xì)胞(多為分化的上皮細(xì)胞或免疫細(xì)胞)和死細(xì)胞。
技術(shù):
自然沉降法: 利用隱窩與單個細(xì)胞沉降速度的差異,將細(xì)胞懸液靜置于冰上5-10分鐘,小心吸取上清(含較多單個細(xì)胞和碎片),重復(fù)2-3次。
密度梯度離心法: 使用如Percoll等密度梯度離心介質(zhì),可以更精細(xì)地分離出高純度的隱窩。
技術(shù)要點(diǎn):
基質(zhì)膠包埋: 將收集到的隱窩與預(yù)冷的基質(zhì)膠(如Matrigel®或Cultrex BME)充分重懸。關(guān)鍵:所有操作必須在冰上進(jìn)行,以防止基質(zhì)膠提前聚合。
以每滴20-50 μL的體積將膠滴加至培養(yǎng)板孔中,隨后在37°C下孵育15-30分鐘,使其固化。
類器官培養(yǎng)基: 在固化的基質(zhì)膠上覆蓋富含生長因子的類器官培養(yǎng)基。核心生長因子組合包括:
Wnt3a: 維持干細(xì)胞自我更新的關(guān)鍵信號。
R-spondin 1: 增強(qiáng)Wnt信號通路。
Noggin: BMP信號通路抑制劑,促進(jìn)隱窩形態(tài)發(fā)生。
EGF: 刺激上皮細(xì)胞增殖。
此外,還需添加B27、N2等補(bǔ)充劑,以及如Gastrin、Nicotinamide等小分子。
培養(yǎng)環(huán)境: 置于37°C、5% CO?的恒溫培養(yǎng)箱中。培養(yǎng)基需每2-3天更換一次,以保持生長因子活性和營養(yǎng)供給。
當(dāng)類器官生長至中心區(qū)域變暗、充滿細(xì)胞時(通常培養(yǎng)后5-10天),需要進(jìn)行傳代。
消化: 使用機(jī)械吹打或溫和的消化酶(如Accutase、TrypLE)將類器官和基質(zhì)膠消化成單個細(xì)胞或小的細(xì)胞團(tuán)塊。
重懸與再鋪板: 將消化后的細(xì)胞懸液按適當(dāng)比例(通常1:3至1:6)與新的基質(zhì)膠混合,開始新一輪的培養(yǎng)。
常見問題 | 可能原因 | 優(yōu)化策略 |
---|---|---|
類器官無法形成或生長緩慢 | 干細(xì)胞活性差、生長因子失效/濃度不足、EDTA過度消化 | 確保組織新鮮;分裝并妥善保存生長因子,使用前檢測活性;優(yōu)化EDTA濃度和孵育時間。 |
類器官中大量出現(xiàn)死亡細(xì)胞 | 消化過度、微生物污染、培養(yǎng)基滲透壓或pH不當(dāng) | 縮短消化時間,使用更溫和的消化酶;加強(qiáng)抗生素/抗真菌劑使用;確保培養(yǎng)基配制準(zhǔn)確。 |
類器官形態(tài)異常(如囊腫化) | Wnt信號過強(qiáng)或失衡、基質(zhì)膠批次差異、消化過度 | 適當(dāng)降低Wnt3a濃度;嘗試不同批次的基質(zhì)膠;優(yōu)化傳代時的消化程度。 |
成纖維細(xì)胞污染 | 黏膜層修剪不齊、分離過程中混雜 | 更精細(xì)地解剖,去除黏膜下組織;利用成纖維細(xì)胞貼壁更快的特性,通過差速貼壁法去除。 |
類器官分化能力不足 | 持續(xù)高水平的干細(xì)胞因子抑制了分化 | 在培養(yǎng)基中撤除Wnt3a和R-spondin,或添加分化誘導(dǎo)因子(如Notch抑制劑DAPT),進(jìn)行分化培養(yǎng)。 |
高效分離具有完整功能的人腸道干細(xì)胞是成功構(gòu)建類器官的前提。掌握從組織處理、EDTA溫和消化到隱窩純化等一系列關(guān)鍵技術(shù)細(xì)節(jié),是獲得高活性、高純度干細(xì)胞群的決定性因素。隨著技術(shù)的不斷進(jìn)步,如利用流式細(xì)胞術(shù)或特定的實(shí)驗(yàn)室儀器分選特定標(biāo)志物(如CD24, CD44)的干細(xì)胞亞群,或通過非整合性重編程手段獲得誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞來源的腸道類器官,將進(jìn)一步拓寬該技術(shù)的應(yīng)用邊界。對技術(shù)要點(diǎn)的深刻理解和不斷優(yōu)化,將是推動人腸道類器官技術(shù)在基礎(chǔ)研究與科研應(yīng)用中發(fā)揮更大價值的關(guān)鍵。
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